Барсучий жир в капсулах инструкция по применению взрослым отзывы врачей - Arganabio.ru - инструкции по эксплуатации и многое другое

Концентрированный барсучий жир в капсулах — это эффективный натуральный препарат, который применяют при вирусных и воспалительных заболеваниях, а также при атеросклерозе, заболеваниях легких и верхних дыхательных путей (трахеи, бронхи, заболевания горла), пониженном иммунитете и нарушении обмена веществ.

Барсучий жир обогащенный (120 капсул) — эффективный препарат, который прошел клинические исследования и соответствует требованиям ГОСТ.

Инструкция по применению «Сустамед» содержит рекомендации по использованию препарата в том числе и в случае повышенного холестерина, нарушения обмена веществ, неправильного питания и полученных травм разной направленности.

Барсучий жир в капсулах — улучшенный состав лекарства — эффективный, безопасный, имеющий лечебное и профилактическое действие. Капсулы содержат полиненасыщенные жирные кислоты (Омега-3), витамин А и Е, масло зародышей пшеницы.

Барсучий жир в капсулах снижает побочные действия других лекарств: антибиотиков и химических препаратов, используемых при лечении тяжелых заболеваний (вирусы, инфекции, онкозаболевания). Препарат получил отличные оценки экспертов и положительные отзывы со стороны пациентов.

Воспалительные и инфекционные заболевания легких и дыхательных путей, сопровождающиеся кашлем и отделением мокроты (бронхиты, пневмонии, туберкулез, бронхиальная астма, ОРЗ и т.д.), атеросклероз, в качестве дополнительного источника Омега-3, гипертония, анемия, гормональные нарушения, заболевания желудочно-кишечного тракта (гастриты, язвы, атония кишечника), общее истощение организма, ослабленный иммунитет, сопровождающийся частыми простудными заболеваниями, синдром хронической усталости.

Противопоказан при индивидуальной непереносимости одного из компонентов.

Барсучий жир (50%), масло зародышей пшеницы (45%), желатиновая оболочка (5%).

Курс приема — 1-2 месяца. Допускается проведение 2-3 курсов в год.

Взрослая дозировка — 8 капсул 3 раза в день, внутрь во время еды.

Источник

ПЕРСПЕКТИВА ИСПОЛЬЗОВАНИЯ БАРСУЧЬЕГО И МЕДВЕЖЬЕГО ЖИРА В ПРОФИЛАКТИКЕ И ЛЕЧЕНИИ ТРОМБОГЕМОРРАГИЧЕСКИХ ОСЛОЖНЕНИЙ

Авторы
Резюме
Файлы
Ключевые слова
Литература

Калашникова С.П.

1

Соловьев В.Г.

1

Никулина Е.Г.

1

Никонова Л.Г.

1

Гагаро М.А.

1 БУ ВО «Ханты-Мансийская государственная медицинская академия»

Изучен процесс свертывания крови в рамках проведения эксперимента по моделированию выброса эндогенного тромбина. Животные дополнительно с пищей получали биологически активные добавки «Барсучий жир», «Медвежий жир». Лабораторных животных подвергали комбинированному стрессу (гипотермия + физическая нагрузка). В организме крыс развивалась активация свертывания крови. Измеряли в плазме крови следующие показатели: количество тромбоцитов, концентрацию фибриногена, активированное частичное тромбопластиновое время, протромбиновое время, тромбиновое время, концентрацию антитромбина, растворимых фибринмономерных комплексов, общую коагуляционную активность тромбоцитов. Установлено, что комбинированный стресс у животных спровоцировал развитие эндогенной тромбинемии, что привело к активации тромбоцитов и выраженному потреблению факторов свертывания. В группе контрольных животных произошло увеличение общей коагуляционной активности тромбоцитов, удлинение клотинговых тестов, уменьшение концентрации фибриногена, увеличение концентрации растворимых фибринмономерных комплексов на всех временных промежутках. В группе животных, получавших добавки, все показатели оставались в норме. В группе опытных животных изменения не выходили за рамки физиологических. Таким образом, показано, что введение барсучьего и медвежьего жира с пищей экспериментальным животным повышает устойчивость организма к острым воздействиям, в том числе в условиях эндогенной тромбинемии, путем снижения чувствительности организма к стрессовым факторам и уменьшения степени последствий тромбогеморрагических осложнений.

свертывание крови

тромбогеморрагические состояния

эндогенная тромбинемия

барсучий жир

медвежий жир

1. Влияние полиненасыщенных жирных кислот ω-3 на некоторые показатели антиоксидантного потенциала крыс / Л.В. Кравченко [и др.] // Вопросы питания. — 2013. – Т. 82, № 2. — С. 4-9.

2. Физиолого-биохимическая оценка обогащения рациона крыс докозагексаеновой кислотой и астаксантином / Ю.С. Сидорова [и др.] // Вопросы питания. — 2015. – Т. 84, № 5. — С. 46-55.

3. Жмурская О.А., Кеца О.В. Биохимические показатели гепатостеатоза и их коррекция ω-3 полиненасыщенными жирными кислотами у крыс — опухоленосителей // Российский биотерапевтический журнал. — 2017. – Т. 16, № 1. — С. 36.

4. Rice M.E. Ascorbate regulation and its neuroprotective role in the brain. Trends Neurosci. 2000. V. 23. P. 209-216.

5. Насыбулина Н.М. Лечитесь жирами животного происхождения // Медицинская сестра. — 2012. — № 5. — С. 54-55.

6. Фисенков Н.Н. Эффективные лекарственные средства при лечении повреждений тканей // Международный вестник ветеринарии. — 2014. — № 3. — С. 40-44.

7. Шевченко А.А. Новый способ лечения трофических язв и длительно незаживающих ран нижних конечностей / А.А. Шевченко [и др.] // Вятский медицинский вестник. — 1999. — № 1. — С. 73-75.

8. Frerichs K.U. Local cerebral blood flow during hibernation, a model of natural tolerance to «cerebral ischemia» // J. Cereb. Blood. Flow Metab. 1994. Vol. 14. Р. 193-205.

9. Абдуллаев В.Р., Ризванов И.Г. Перекисное окисление липидов в коре головного мозга сусликов в динамике зимней спячки // Успехи современной науки. — 2016. — Т. 5. — № 11. — С. 156-161.

10. Антиоксидантные ферменты у природно-адаптированных к дефициту кислорода млекопитающих / Е.П. Антонова [и др.] // Принципы экологии. – 2013. — № 1. — С. 21-32.

11. Чернилевский В.Е. Проблемы гипобиоза и продления жизни // Сборник МОИП. Секция геронтологии. — 2008. — № 41. — С. 105-123.

12. Hermes-Lima M., Zenteno-Savin T. Animal response to drastic changes in oxygen availability and physiological oxidative stress // Comp. Biochem. Physiol. 2002. Vol. 133. P. 537-556.

13. Ермакова Е.Е Народная медицина ижемцев Нижнего Приобья // Вестник Тюменского государственного университета. Гуманитарные исследования. — 2009. — № 7. — С. 173-180.

14. Нанзатов Б.З., Содномпилова М.М. Народно-бытовая медицина монгольских народов: средства животного происхождения в представлениях и практиках // Известия Иркутского государственного университета. Сер.: Геоархеология. Этнология. Антропология. — 2016. — Т. 17. — С. 126-145.

15. Лабораторные методы исследования системы гемостаза / В.П. Балуда, З.С. Баркаган, Е.Д. Гольдберг и др. — Томск, 1980. — 310 с.

На сегодняшний день активно ведется поиск средств неспецифической защиты от свободнорадикальных процессов, которые, как известно, могут являться причиной развития серьезных патологических процессов в организме, в том числе сопровождающихся тромбогеморрагическими осложнениями [1]. В этом отношении все большее значение в медицинской практике приобретают препараты и биологически активные добавки животного происхождения, оказывающие мощный антиоксидантный эффект [2-4]. Показано, что весьма перспективными в этом отношении являются средства, получаемые из жиров зимоспящих животных [5]. Чаще всего эти препараты используются как источники полиненасыщенных жирных кислот и витаминов [6-8].

Известно, что время, когда животные подвержены гибернации – это необходимый способ адаптации к понижению температуры окружающей среды. Именно в этот период в организме животных происходят радикальные изменения показателей гомеостаза.

Показано, что в этот время в организме животных может развиваться такое состояние, как гипероксигенация, а в связи с этим последующая активация свободнорадикальных процессов, мобилизация антиоксидантных систем, в том числе ферментных [9; 10]. Устойчивость же к активации свободнорадикальных процессов в этот период, как показывает ряд исследований [11; 12], им обеспечивает высокая активность антиоксидантных ферментов, большой запас в организме бурого жира, в котором преобладают ненасыщенные жирные кислоты (линолевая, линоленовая, олеиновая), а также витамины А, Е. Может быть, поэтому, именно благодаря этим свойствам животные жиры издревле использовали в отечественной и восточной народной медицине в лечении целого ряда заболеваний [13; 14].

В настоящее время имеются единичные научные подтверждения в области биохимического исследования и использования животных жиров в медицине. Чаще в этих работах данные субстанции рассматриваются в качестве средств, усиливающих регенерацию покровных тканей. Однако, учитывая мощный антиоксидантный потенциал данных препаратов, можно предположить их позитивный эффект в лечении целого ряда других патологий, причиной развития которых является активация свободнорадикальных процессов, в том числе и в области нарушений свертывания крови.

Цель исследования. Изучить параметры первичного и вторичного гемостаза в условиях эндогенного выброса тромбина на фоне дополнительного приема с пищей природных микстов «Барсучий жир», «Медвежий жир» (ООО «Багира», Россия).

Материалы и методы исследования. В обеих сериях экспериментов использовались (в качестве экспериментальных животных) нелинейные белые крысы (вес 350-400 г, возраст 3-4 мес.). Количество крыс в каждой группе составляло 12 в серии с барсучьим жиром, 14 – в серии с медвежьим жиром.

Животные содержались на стандартном сбалансированном рационе с необходимым количеством органических веществ и минералов. Дополнительно в пищу животным опытных групп добавляли природные миксты «Барсучий жир» (ООО «Багира», Россия), (далее барсучий жир), «Медвежий жир» (ООО «Багира», Россия), (далее медвежий жир). Введение крысам жиров осуществляли с помощью зонда 21 день (0,08 мл на 100 г веса животного), согласно инструкции по применению данных образцов. Дозы вводимых добавок для животных рассчитывались с учетом межвидового перерасчета доз на основе соотношений поверхности и массы тела животного Контрольные животные жиры не получали.

Забор крови все последующие операции проводили под действием наркоза (этоксиэтан). Яремную вену обнажали овальным разрезом и забирали образцы крови. Кровь для анализа забирали с 3,8% раствором цитрата натрия (1:9), для исследования тромбоцитарного гемостаза использовался забуференный раствор глутарового альдегида (0,125%). Все операции, начиная с забора крови, проводились согласно правилам, установленным для исследований, связанных с исследованием свертывания крови [15].

Оценку плазменного гемостаза (АЧТВ – активированное частичное тромбопластиновое время; ПТВ – протромбиновое время; ТВ – тромбиновое время; АТ–III – активность антитромбина–III; ФГ – содержание фибриногена, содержание РФМК) проводили по наборам фирмы «Технология-стандарт» (г. Барнаул) на коагулографе «Реалайт» (ООО «Дисксион», Россия). Концентрацию тромбоцитов (PLT) осуществляли с помощью световой микроскопии в камере Горяева по методу Шитиковой [15], а также на гематологическом анализаторе «Гемалайт» (ООО «Дисксион», Россия), общую коагуляционную активность тромбоцитов (ОКАТ) оценивали по изменению времени свертывания в плазме в тесте АВР (активированное время рекальцификации).

Состояние эндогенного выброса тромбина моделировали путем опробированной модели комбинированного стресса (гипотермия + физическая нагрузка): экспериментальных животных опускали в воду (+15 °С) на 30 минут, низкая температура воды заставляла их двигаться. Образцы крови забирали в следующие сроки: до воздействия, а также спустя 0,1, 1 и 3 ч после его окончания.

В опыте с барсучьим жиром активацию гемостаза моделировали с помощью острого холодового стресса: экспериментальных животных опускали в емкости с водой (+5 °С), затем подвергали экспозиции в окружающую среду (на 15 мин. при температуре -15 °С).

Результаты исследований, имеющие цифровое выражение, анализировали методом вариационной статистики для малых рядов наблюдений. Для оценки достоверности отличий вычисляли доверительный коэффициент Стьюдента (t) и степень вероятности (p). Различия считали достоверными при значениях p<0,05.

Результаты и обсуждение

С целью достижения цели нашего исследования нами было проведено две серии экспериментов. Сначала нами было изучено состояние гемостаза на фоне введения барсучьего жира в условиях активации выброса эндогенного тромбина.

С целью выполнения задач исследования нами был выбрана экспериментальная модель, приводящая к выбросу в сосудистое русло основного фермента гемостаза – тромбина. Известно, что тромбин – это полифункциональный фермент, который регулирует не только активность свертывающей системы, но и противосвертывающей и фибринолитической. Являясь ключевым ферментом свертывания крови, тромбин обеспечивает активацию всех клеток крови, в частности тромбоцитов, одновременно активируя ферменты плазмокоагуляции и фибринолиза.

Оценка параметров гемостаза в норме и в условиях острого стресса выявила следующие результаты.

В плазме крови контрольных животных в ответ на стрессовое воздействие произошло резкое снижение количества тромбоцитов. Уменьшение количества тромбоцитов сразу после воздействия составило 15%, через 30 минут — 30%. В плазме крови животных, получавших дополнительно природный микст, почти не наблюдалось изменения концентрации тромбоцитов (табл. 1).

Таблица 1

Показатели свертывания крови у животных на фоне активации гемостаза

Показатели	Интактные животные	Контрольные животные (не получали БАД)	Животные (получали с рационом БАД)
После стресса	Через 30 мин.	После стресса	Через 30 мин.
PLT, 1х10⁹/л	315,4±6,83	269,2±19,71	217,8±26,02	319,5±16,6*	316±13,35*
ФГ, г/л	7,09±1,6	3,43±0,68	3,06±0,23	4,13±0,57	3,02±0,24
АЧТВ, с	27,92±0,54	18,55±0,22	18,72±1,41	29,01±0,42*	19,46±0,22
ПТВ, с	7,97±0,59	22,92±0,48	17,54±2,21	17,93±0,48*	23,67±0,51*
ТВ, с	51,57±0,51	44,23±1,25	43,93±1,79	29,6±2,35*	43,53±2,27
АТ-III, %	95,62±1,7	95,47±3,68	91,32±1,83	98,26±1,34	107,6±0,4*
ОКАТ, %	18,5±1,93	28,2±2,42	15,52±0,44	14,34±1,31*	21,04±1,67*
РФМК, мг%	5,87±0,2	9,62±0,79	19±0,76	10,62±0,83	16,5±0,82

Примечание: PLT – количество тромбоцитов; АЧТВ – активированное частичное тромбопластиновое время, ПТВ – протромбиновое время, ТВ – тромбиновое время, ФГ – содержание фибриногена, АТ-III – активность антитромбина-III, ОКАТ – общая коагуляционная активность тромбоцитов, РФМК – растворимые фибринмономерные комплексы. Знаком * отмечены достоверно отличающиеся показатели (р <0,05) по сравнению с показателями контрольной группы животных.

В плазме крови контрольных животных произошла активация гемостаза: наблюдается рост общей коагуляционной активности тромбоцитов (на 51%) (табл. 1). В группах опытных животных изменения со стороны тромбоцитарного гемостаза не выходили за рамки физиологических.

Таким образом, у животных, получавших дополнительно жир, наблюдается снижение потребления тромбоцитов и ослабление их общей коагуляционной активности, что свидетельствует о более адекватной реакции в условиях стрессового воздействия.

Оценка параметров плазменного гемостаза показала, что у животных контрольной группы стресс-воздействие вызвало выраженные изменения, характерные для переходной фазы ДВС, а именно – рассогласование показателей клоттинговых тестов: уменьшение активированного частичного тромбопластинового времени (на 33%), удлинение протромбинового времени (в 3 раза), увеличение активированного времени рекальцификации (на 18%), уменьшение концентрации фибриногена (в 2 раза). Об активации тромбиногенеза свидетельствует и рост содержания РФМК на протяжении всего эксперимента (табл. 1).

В группах опытных животных происходили похожие изменения, но анализируемые показатели по свертыванию крови были почти аналогичны показателям животных, не подвергнутых стрессовому воздействию.

Воспроизведение апробированной модели комбинированного стресса (эндогенная тромбинемия) в группах животных, получавших с пищей медвежий жир, показало следующее.

Экспериментальная модель (комбинированный стресс) была подобрана таким образом, чтобы животные испытывали повышенную нагрузку, в частности физическую (животные, попав в воду, вынуждены были держаться на плаву) и, в связи с тем что температура воды составила всего лишь + 15 °С – гипотермическую. Известно, что стрессовые реакции такого типа вызывают у животных ускорение свертывания, вплоть до развития диссеминированного свертывания крови.

В результате эксперимента мы получили следующие данные: уже через 0,1 ч после стресса у животных контрольной группы развивалось состояние гиперкоагуляции. Наблюдалось резкое укорочение активированного частичного тромбопластинового времени (на 24,9%) и протромбинового времени (на 16,8%) и удлинение тромбинового времени. Существенно выросла концентрация растворимых фибринмономерных комплексов, произошло значительное потребление фибриногена. Закономерно увеличилась активность антитромбина-III (на 52,8%) (табл. 2).

Через час после стрессового воздействия наблюдалась глубокая гипокоагулемия (судя по результатам клоттинговых тестов), также наблюдалось существенное потребление антитромбина-III (произошло уменьшение активности почти в 2,3 раза).

Таблица 2

Показатели свертывания крови у животных, получавших и не получавших биологически активную добавку «Медвежий жир» на фоне активации гемостаза

Исследуемые показатели	Сроки наблюдения в условиях комбинированного стресса
Без воздействия	0,1 ч	1 ч	3 ч
PLT, ×10⁹/л	958,2±26,1	1067,7±21,6*	1287,8± 28,0*	866,5±23,9*
868,6±22,6⁰	913,5±25,4⁰	862,6±27,4⁰	776,1±23,3⁰*
АЧТВ, с	20,9±0,4	15,7±0,5*	18,7±0,3*	20,3±0,3
18,5±0,5⁰	17,4±0,5⁰	17,8±0,4⁰	18,7±0,5⁰
ПТВ, с	27,9±0,3	23,2±0,4*	14,7±0,9*	29,6±0,3*
29,8±0,6⁰	22,3±0,7*	13,2±0,1*	28,1±1,3
ТВ, с	19,1±0,7	21,7±1,0*	17,3±0,7*	26,6±0,6*
23,6±0,8⁰	19,7±1,8*	18,6±0,9*	22,7±0,4⁰
ФГ, г/л	4,0±0,1	3,7±0,1*	5,9±0,3*	5,1±0,2*
5,0±0,1⁰	4,6±0,2*⁰	3,0±0,1*⁰	4,1±0,1*⁰
АТ-III, %	108,8±13,8	172,2±13,1*	76,3±4,8*	113,5±9,1
260,4±13,2⁰	194,1±10,8*	89,4±9,4*	105,3±16,8*
РКМФ, мг/%	5,2±0,3	7,9±0,5*	7,7±0,1*	7,3±0,1*
4,6±0,1⁰	5,8±0,1*⁰	6,3±0,3*⁰	4,4±0,1⁰

Примечания: первая строка по каждому показателю – контрольная группа, нижняя – опытная. Знаком * отмечены достоверно отличающиеся показатели (р <0,05) по сравнению с показателями животных без воздействия, знаком ⁰ – по сравнению с показателями первой строки.

К окончанию эксперимента (к исходу 3 часа) оставался повышенным показатель тромбинового времени (на 39,3%), что может быть связано с высокой концентрацией в плазме крови продуктов фибринолитической системы. Сохранялась нормальная концентрация фибриногена и активность АТ-III.

Необходимо отметить, что активированное частичное тромбопластиновое время сразу через 0,1 ч резко укорачивалось почти на 25%, в отличие от показателей животных, получавших биологически активную добавку. Данное обстоятельство и отличия в содержании тромбоцитов, фибриногена и РФМК в группе контрольных животных, позволяют рассматривать медвежий жир в аспекте его антистрессорного эффекта.

Таким образом, можно предполагать, что вещества, входящие в состав медвежьего жира, некоторым образом (что требует более тщательного изучения) ограничивают выброс в организме гормонов стрессорного ряда.

С целью подтверждения данного факта мы измерили концентрацию адреналина у животных контрольной и опытных групп.

Результаты выявили следующее: у контрольных животных к окончанию стрессового воздействия произошло сначала резкое потребление, а затем повышение концентрации адреналина в плазме крови.

У животных, получавших биологически активную добавку с пищей, концентрация адреналина была значительно меньше, чем в контроле, и оставалась постоянной на протяжении всего эксперимента. Таким образом, можно предполагать, что животные опытной группы (получавшие с пищей медвежий жир), были более устойчивы к воздействию стрессорного фактора, чем животные контрольной группы. Что также отразилось и на состоянии гемостаза.

В группе опытных животных последствия комбинированного стресса со стороны сосудисто-тромбоцитарного и коагуляционного гемостаза были менее выражены.

Анализируя показатели клоттинговых тестов, следует отметить, что активированное частичное тромбопластиновое время в этих группах не отличалось от показателей исходных цифр, также показатель тромбинового времени и содержание растворимых фибринмономерных комплексов были ниже, чем в группе контрольных животных, а к окончанию эксперимента даже вернулись к исходному значению (табл. 2).

В группе контрольных животных было установлено увеличение содержания тромбоцитов (уже к 1 ч на 34,3 %), причем с преобладанием активированных форм. Также в плазме крови наблюдалось образование больших и малых тромбоцитарных агрегатов.

Напротив, в группе животных, получавших с пищей данный природный микст, роста концентрации тромбоцитов не происходило (табл. 2). Наблюдалось также образование активированных форм, но их концентрация в ходе всего эксперимента оставалась постоянной, таким образом, часть тромбоцитов, вовлеченных в образование малых агрегатов, была постоянной.

Заключение

Таким образом, дополнительное введение животным с пищей барсучьего и медвежьего жиров ограничивает последствия эндогенной тромбинемии со стороны тромбоцитарного и коагуляционного звеньев гемостаза, а также повышает противосвертывающий потенциал.

На основании этого можно предполагать, что изучаемые жиры при употреблении их в оптимальных дозах способны ограничивать последствия гиперкоагуляции путем ограничения активации как внешнего, так и внутреннего пути плазмокоагуляции, а учитывая то, что эти пути взаимно потенцируют друг друга, становится понятно насколько позитивным может быть эффект влияния данных биологически активных добавок на гемостаз в условиях острого стресса.

В связи с этим можно полагать, что при условии раскрытия более детального механизма влияния химических компонентов жиров животного происхождения на систему свертывания крови возникает реальная перспектива их использования в качестве эффективных средств профилактики тромбогеморрагических осложнений.

Библиографическая ссылка

Калашникова С.П., Соловьев В.Г., Никулина Е.Г., Никонова Л.Г., Гагаро М.А. ПЕРСПЕКТИВА ИСПОЛЬЗОВАНИЯ БАРСУЧЬЕГО И МЕДВЕЖЬЕГО ЖИРА В ПРОФИЛАКТИКЕ И ЛЕЧЕНИИ ТРОМБОГЕМОРРАГИЧЕСКИХ ОСЛОЖНЕНИЙ // Современные проблемы науки и образования. – 2018. – № 4.
;

URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=27786 (дата обращения: 25.04.2023).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»

(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

Источник

Кашель это естественный безусловный рефлекс человека, помогающий освободить дыхательные пути от различных раздражителей. Ими могут выступать многочисленные микрочастицы, бактерии, пыль и инородные тела. Сухой кашель в медицинской практике принято называть непродуктивным. Он приносит человеку множество неудобств. Лечение сухого кашля у взрослого направлено на подавление этого рефлекса. Симптом сопровождает различные заболевания. Срочно обратитесь к врачу, если кашель сопровождается: повышением температуры тела, отеками нижних конечностей, сильными режущими болями при глотании, затруднением дыхания, болями при вдохе, учащенным сердцебиением.

Информацию из данного раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. В случае боли или иного обострения заболевания диагностические исследования должен назначать только лечащий врач. Для постановки диагноза и правильного назначения лечения следует обратиться к профильному специалисту.

Причины першения в горле и сухого кашля

Провоцировать появление такого симптома могут различные заболевания. От причин зависит и лечение першения в горле и сухого кашля. Такие симптомы, сопровождающиеся повышением температуры тела и насморком, характерны для подавляющего большинства острых респираторных заболеваний.

Основными причинами кашля являются:

Астма;
Воспалительные заболевания верхних дыхательных путей;
Рак горла, бронхов или трахеи;
Туберкулез;
Попадание инородного тела;
Болезни щитовидной железы.

Другие, менее распространенные причины: аллергия, сердечная недостаточность. На фоне сильного стресса или эмоционального переживания может возникнуть сухой кашель у взрослого. Лечение такого психогенного симптома достаточно длительное и направлено на устранение причины беспокойств. Возникает такой кашель при сильном смущении, нервном потрясении или волнении. Без врачебной диагностики определить причину кашля очень сложно. Поэтому не стоит откладывать посещение специалиста. Своевременная консультация поможет избежать осложнений.

Профессиональная помощь: диагностика

Как лечить у взрослых сухой кашель, может точно ответить специалист только после тщательного комплексного обследования пациента. Для этого в первую очередь нужно обратиться за помощью к врачу терапевту или семейному врачу. Оно начинается с опроса больного и зрительного осмотра. Далее врач назначает ряд диагностических процедур, которые помогут точно определить причину сухого кашля:

Основные методы диагностики сухого кашля у взрослых

Методика диагностики	Время
Общий анализ крови	15-30 минут
Аллергопробы	30 минут
Рентген легких	30 минут

Эти диагностические процедуры можно пройти почти в любом мед центре.

Какой врач лечит сухой кашель у взрослых?

При появлении сухого кашля у взрослых стоит обратиться к терапевту, который проведет осмотр и поставит верный диагноз.