Иммуногистохимическое исследование
Альтернативные названия: ИГХ, англ.: Immunohistochemistry или IHC.
Иммуногистохимическое исследование – особый метод диагностики опухолевых заболеваний. Суть метода заключается в изучении под микроскопом образов тканей, предварительно обработанных специфическими антителами.
Опухолевые клетки продуцируют специфические белки (антигены), которые способны связываться с определенными антителами. Во время проведения ИГХ образец ткани обрабатывается различными стандартными антителами, а затем исследуется под микроскопом. Антитела, связанные опухолевыми клетками обладают свойством флуоресценции – способностью светиться под лучами с определенной длиной волны. Это свечение и позволяет определить раковые клетки.
В настоящее время созданы антитела практически ко всем опухолям.
С помощью иммуногистохимического исследования выполняется:
- определение вида и подвида опухоли;
- определение распространенности онкологического очага;
- при исследовании метастазов определяется их источник;
- оценка эффективности лечения онкозаболеваний;
- определение степени злокачественности опухоли;
- выясняется пролиферативная активность опухолей (с какой скоростью они растут).
Показания для иммуногистохимического исследования
С помощью этого метода можно исследовать любые ткани. Главным показанием к проведению является подозрение на опухолевый процесс.
Определены следующие показания для ИГХ:
- иммунофенотипирование первичных солидных (одиночных) опухолей;
- иммунофенотипирование метастазов;
- определение прогноза исхода опухолевого процесса;
- исследование рецепторов к различным гормонам;
- иммунофенотипирование лимфопролиферативных состояний;
- определение микроорганизмов.
Противопоказания
К данному методу исследований нет противопоказаний. Его проведение невозможно лишь в том случае, если нет возможности получить биопсийный материал.
Как проводится иммуногистохимическое исследование
Само исследование состоит из четырех этапов:
- Долабораторный этап, заключающийся в получении адекватного образца ткани для анализа. Ткань для исследования может быть получена с помощью инцизионной или эксцизионной биопсии, punch-biopsy (с помощью щипцов) или же в ходе эндоскопической операции. Процедура получения биоптата, а также подготовка к ней, определяются видом и локализацией опухоли. Полученную ткань помещают в 10% раствор формалина и отправляют в лабораторию.
- Подготовка, в ходе которой производится обработка биоптата с последующим первичным его изучением. На этом же этапе из кусочка ткани готовят тончайшие срезы.
- Окрашивание срезов иммуногистохимическими препаратами, представляющими собой раствор специфических антител. В зависимости от того сколько различных типов антител использую, выделяют малую и большую панели исследования. В малую панель входит до 5 антител, в большую – от 6 и до нескольких десятков. Количество определяемых маркеров зависит от предполагаемого диагноза.
- Исследование и анализ окрашенных образцов, после которого выносится заключение.
Результаты исследования становятся известны через 7 дней (при стандартном исследовании – «малая панель») или через 15 (расширенное исследование – «большая панель»).
Интерпретация результатов
Изучением образцов занимается врач-патологоанатом, прошедший специальную подготовку по ИГХ. В заключении врач отмечает, к каким антителам определена тропность (сродство) ткани. Дополнительно описывается морфологическая структура образца – какие клетки и в каком количестве присутствуют.
Выявление сродства ткани к определенным стандартным опухолевым антителам свидетельствует о конкретном виде онкологического заболевания.
Дополнительная информация
Иммуногистохимическое исследование в настоящее время является наиболее точным методом диагностики опухолевых заболеваний. Оно позволяет с точностью до 99% поставить окончательный диагноз, определить вид опухоли, выявить ее первичную локализацию.
Литература:
- Проект приказа Минздрава России от 21 ноября 2012 г. «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи по профилю «патологическая анатомия»
- Иммуногистохимические методы: руководство. Пер. с англ. под ред. Г.А. Франка и П.Г. Малькова // М., 2011, – 224 с.
Вы можете получить услугу «Иммуногистохимическое исследование»
В одной из: 51 клинике в Москве
со средней стоимостью: 11734 руб.
Иммуногистохимические методы [Текст] : руководство
Карточка
Иммуногистохимические методы [Текст] : руководство / ed. George L. Kumar, Lars Rudbeck ; рус. изд. под ред. Г. А. Франка, П. Г. Малькова ; [пер. с англ. Н. В. Данилова, Л. В. Москвина, Н. М. Гайфуллин]. — Москва : [б. и.], 2011. — 223 с. : ил.; 24 см.; ISBN 978-5-91366-295-8
На обл. : Dako
Указ.
Здравоохранение. Медицинские науки — Патологическая анатомия — Методы и техника патологоанатомических исследований — Микроскопическая техника — Практические руководства
Иммуногистохимия — Практические пособия
иммуногистохимические методы в патоанатомии
Шифр хранения:
FB 2 11-52/230
FB 2 11-52/229
Описание
| Заглавие | Иммуногистохимические методы [Текст] : руководство |
|---|---|
| Дата поступления в ЭК | 22.08.2011 |
| Каталоги | Книги (изданные с 1831 г. по настоящее время) |
| Сведения об ответственности | ed. George L. Kumar, Lars Rudbeck ; рус. изд. под ред. Г. А. Франка, П. Г. Малькова ; [пер. с англ. Н. В. Данилова, Л. В. Москвина, Н. М. Гайфуллин] |
| Выходные данные | Москва : [б. и.], 2011 |
| Физическое описание | 223 с. : ил.; 24 см |
| ISBN | ISBN 978-5-91366-295-8 |
| Примечание | На обл. : Dako |
| Указ. | |
| Тема | Здравоохранение. Медицинские науки — Патологическая анатомия — Методы и техника патологоанатомических исследований — Микроскопическая техника — Практические руководства |
| Иммуногистохимия — Практические пособия | |
| иммуногистохимические методы в патоанатомии | |
| BBK-код | Р251с251я81 |
| Язык | Русский |
| Места хранения | FB 2 11-52/230 |
| FB 2 11-52/229 |
Immunohistochemistry (IHC) is currently the main ancillary technique of proven clinical value for the diagnosis of melanocytic tumors.
From: Dermatopathology, 2010
Methods of Analysis
E. Aikawa, in Comprehensive Biomaterials, 2011
Abstract
Immunohistochemistry is a valuable tool for the identification and visualization of tissue antigens in biological research and clinical diagnostics. Immunohistochemistry can characterize various biological processes or pathologies, such as wound-healing, immune response, tissue rejection, and tissue–biomaterial interactions. Specific antigen–antibody reactions can localize key molecules (e.g., cytokines, enzymes, transcription factors) associated with each process within the tissues. Combined use of antibodies for such molecules and cell type-specific markers can identify the major cell sources and examine cell phenotypic changes (e.g., differentiation, activation). The careful validation and protocol optimization, as well as selection of the proper microscopy methods (bright-field vs. fluorescence microscopy), enable us to obtain specific and reproducible results. In addition, various newly developed fluorescent dyes, excellent color contrast, high resolution, and the possibility of simultaneous multicolor imaging make immunofluorescence microscopy a convenient tool for studying pathobiological processes at the cellular level. This chapter provides a general introduction to immunohistochemistry, including background information about antibody–antigen interaction, labeling techniques, tissue processing, basic immunohistochemical methods, and data interpretation. It also discusses the impact of immunohistochemistry in biomaterial research and current understanding of the pathological processes of wound-healing after implantation.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780080552941001008
Immunohistochemistry
Clifton P. Drew, Wun-Ju Shieh, in Current Laboratory Techniques in Rabies Diagnosis, Research and Prevention, Volume 2, 2015
10.1 Introduction
Immunohistochemistry (IHC) is a method to identify specific antigens within tissue sections utilizing an antigen-specific antibody. Detection at the light microscopic level of antigen–antibody interactions can be achieved by labeling the antibody with a substance that can be visualized, either by conjugation to a fluorescent marker or enzyme followed by colorimetric detection. Immunologic detection of antigens dates to the early 20th century when Marrack demonstrated that anti-typhoid and anti-cholera sera-labeled with diazotized benzidine-azo-r-salt imparted a red color to the bacteria.1 Although groundbreaking for immunological detection of antigens, Coons determined this labeling method to be relatively insensitive when applied to tissues, and subsequently described assays utilizing fluorescent-labeled antibodies in fixed tissues, but interpretation was confounded by the enhanced endogenous fluorescent activity in formalin-fixed tissue.2–6 In 1966, Nakane described a method of antigen detection in tissue using an antibody conjugated to an enzyme (horseradish peroxidase) and utilized a colorimetric substrate that could be detected by light microscopy, which is the theoretical basis of most modern tissue-based immunohistochemical assays.7 This chapter will focus on detection of rabies virus (RABV) antigens in formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) tissues. The materials and methods describe a single protocol.8 However, the reader is encouraged to investigate the many alternative non-proprietary and proprietary protocols that are also available.9,10 Detection of antigens in FFPE tissues presents a unique diagnostic challenge regarding validation of the assay and interpretation of the results. Readers unfamiliar with this method should seek input from technicians and pathologists experienced with assay design and interpretation, particularly related to variation in basic protocols as to the impact upon test sensitivity and specificity.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780128019191000105
Immunohistochemistry
DEBRA HAWES, … RICHARD J. COTE, in Modern Surgical Pathology (Second Edition), 2009
Limitations
Although immunohistochemistry is an extremely valuable technique in experienced hands, its limitations must be recognized for it to be used to its maximum potential.
Experience
Although immunohistochemistry is more objective than routine morphologic examination, the experience of the pathologist assessing the slides is critical. A firm understanding of the principles of immunohistochemical staining is necessary because the reporting pathologist must be equipped to deal with the unexpected and conflicting results that inevitably occur. To evaluate the immunohistochemical slides properly, the pathologist must have a firm understanding of the limitations of antibodies in terms of their technical aspects as well as their inherent specificity, sensitivity, and expected subcellular location.
Availability of Antibodies
The advent and refinement of the hybridoma technique for the production of monoclonal antibodies have produced a large number of available antibodies. Often a newly developed antibody is hailed as exquisitely specific. In time, however, most are found to be considerably less specific than initially hoped, generally because the antigen the antibody detects has a wider distribution than expected. This fact does not negate the usefulness of the antibody in question, but it may mean that panels of antibodies must be used in conjunction with standard morphologic features and clinical history.
Loss of Antigenicity in Stored Cut Paraffin Sections
Many studies have shown that a loss of antigenicity can occur on cut paraffin sections that have been stored for varying lengths of time.15-17 Among the antibodies studied, those most adversely affected by storage include p53,15,17 MIB1,16,17 factor VIII–related antigen,15 estrogen receptor,15 bcl-2,15 p27kip1,16 CD-44s,16 and androgen receptor.16 In many cases, the use of carefully selected and tested antigen retrieval techniques can compensate for this loss.17
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9781416039662000163
Immunohistochemistry
John T. Corthell Ph.D., in Basic Molecular Protocols in Neuroscience: Tips, Tricks, and Pitfalls, 2014
This chapter begins with a discussion on the types of immunohistochemical staining that one can pursue, followed by a discussion on secondary antibodies and signal amplification that is common to immunohistochemistry. The discussion ends with notes on running immunohistochemistry with multiple reactions at once. There are protocols for colorimetric staining, fluorescent staining, and cresyl violet staining of fixed tissue. Most protocol steps include notes from the author describing problems, tips, and tricks relevant for each step. The protocols are followed by a section describing the proper controls for immunohistochemistry, as well as a troubleshooting section and recipes for the solutions referenced in the protocols.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780128014615000101
Techniques for Protein Analysis
Gülay Büyükköroğlu, … Candan Hızel, in Omics Technologies and Bio-Engineering, 2018
15.1.7.4 Applications
IHC has different application areas such as drug development, molecular biology, and diagnosis. Major changes in the expression pattern of antigen, specific cell, or tissue expression pattern of antigen, tissue or cellular localization of antigen can be determined by IHC. IHC is also used for diagnosis of diseases by specific tumor markers that can determine the origin of tumor and grade of tumor cells, identify the cell type, classify the tumor type as malign or benign, and determine the localization. Membrane antigens, antigens localized in the nucleus and structural antigens in the cytoplasm, could be identified by IHC. Quantitative analysis of IHC can be achieved by computer-based programs designed for IHC such as BLISS, ACIS, iVision, GenoMx, ScanScope, LSC, and AQUA (Cregger et al., 2006).
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780128046593000154
Immunohistochemical Detection Methods
T.L. Lewis, K.A. Roth, in Pathobiology of Human Disease, 2014
Conclusion
IHC is a useful diagnostic and invaluable research tool. From its relatively simple beginnings, a variety of powerful IHC amplification methods are now available for detecting antigens in a host of tissues. Whether utilizing fluorescent or chromogenic detection, single or multiple labeling, or direct and indirect methods, excellent results can typically be obtained when factors such as proper controls, pretreatment of tissues, and optimization of protocols are taken into account. While no one protocol will work for all IHC demands, careful planning and intelligent IHC trouble shooting will significantly enhance the probability of success.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780123864567074050
Spitz Nevi
Pedram Gerami, Klaus J. Busam, in Pathology of Melanocytic Tumors, 2019
Immunohistochemistry
IHC is of some, but limited, help for the diagnosis of Spitz lesions. It is important to document loss of BAP1 for the diagnosis of a BAP1-deficient epithelioid cell nevus or tumor. Furthermore, IHC for HRAS can help to support a suspected diagnosis of a desmoplastic Spitz nevus. IHC for p16 can be used to determine whether further cytogenetic testing is needed. If a Spitz lesion, for example, displays atypical findings and there is complete or near complete loss of p16 expression by IHC, further investigation by fluorescence in situ hybridization (FISH) for the presence of homozygous deletions of 9p would be judicious.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780323374576000043
Intracellular Signaling and Biochemical Assays
Matt Carter, … Manasi Iyer, in Guide to Research Techniques in Neuroscience (Third Edition), 2022
Immunohistochemistry
Immunohistochemistry (IHC) is described in more detail in Chapter 6 as a method to visualize the expression of proteins in cells or brain sections. The advantage of using IHC over WB, ELISA, and RIA methods is that it can visualize the spatial expression of a protein in specific populations of cells within a tissue sample. IHC can also sometimes show the location of a protein within a cell, such as the cytoplasm versus the nucleus (Fig. 14.12). Immunoelectron microscopy (IEM) is an extension of IHC used in combination with electron microscopy (Chapter 5) to visualize protein expression within subcellular structures at extremely high resolution. Similar to a cell fractionation procedure followed by a western blot, IEM can be used to determine if a protein is localized in a particular subcellular compartment. Although IHC and IEC are great methods for showing the spatial presence and distribution of a protein, these techniques are not precise for quantifying or comparing the amount of protein present in different samples.
Figure 14.12. Immunohistochemistry reveals the presence and locations of proteins within specific cells.
An example of the product of an immunohistochemistry experiment using an antibody for tyrosine hydroxylase in the substantia nigra in a mouse brain section. A secondary antibody tagged with a green fluorophore was directed against the primary antibody. Green fluorescence shows the specific cells that express tyrosine hydroxylase, as well as the location of tyrosine hydroxylase within the cytoplasm and axon fibers. The donut-shaped appearance of the cells demonstrates the absence of green signal in the nucleus, demonstrating that tyrosine hydroxylase is a cytoplasmic protein.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780128186466000014
Practice of Toxicologic Pathology
Kevin S. McDorman, … James P. Morrison, in Haschek and Rousseaux’s Handbook of Toxicologic Pathology (Third Edition), 2013
Evaluation of Infectious Disease Agents
Immunohistochemistry using antibodies against various infectious agents is commonly performed and can be useful in toxicologic pathology (see also Basic Approaches in Anatomic Toxicologic Pathology, Chapter 6). If immunomodulatory compounds are administered, it is possible that increased susceptibility to infectious agents may occur in the test species due to immunosuppression, and such agents may be detected using IHC. Evaluation of background infectious diseases in a research animal colony also is possible. Animal models of infectious disease are used frequently to evaluate the efficacy of potential therapeutic compounds, and IHC for the particular infectious agent may help evaluate responses to therapy. Finally, viral vectors often are used to deliver gene therapy compounds, and IHC may be used to detect the presence of the viral vector to ensure delivery to the target organ (in situ hybridization is often used for this purpose as well).
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780124157590000078
Molecular Testing in Lung Cancer
Celine Mascaux, … Fred R. Hirsch, in IASLC Thoracic Oncology (Second Edition), 2018
Protein Expression
Immunohistochemistry (IHC) is most commonly used for protein expression assessment in the clinical context. IHC is a process that is easily performed by investigators because of the short time needed to complete testing and low cost, and due to its applicability to formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) rather than fresh frozen tissue. In addition, IHC may help investigators assess protein expression at the cellular level, thus allowing them to evaluate cellular localization (e.g., membranous, nuclear, or cytoplasmic), topography (e.g., tumor or stromal cells), and heterogeneity of expression and is also applicable to very small specimens, including cytologic samples. However, many preanalytic and analytic factors may influence IHC reactions, resulting in potentially variable staining that may affect the interpretation of the results. Therefore optimizing and standardizing the protocols and conditions are required for each marker tested. Interpreting the results is also observer dependent and may vary between observers, thus requiring standardization of protocols and conditions. Lastly, the scores for defining positive or negative IHC results for their prognostic or predictive value of specific biomarkers need to be well defined and validated in multiple independent cohorts/institutions and clinical trial samples. However, despite the mentioned limitations, IHC is considered to be an easy and inexpensive clinically applicable assay, which already is available in most pathology departments.
Read full chapter
URL:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B9780323523578000184
Опухоль под микроскопом: зачем нужны иммуногистохимические исследования?
Иммуногистохимические исследования сегодня стали рутиной любой диагностической службы. Более половины всех биоптатов и более 80% онкологических биоптатов подвергаются дополнительному иммуногистохимическому исследованию.
Что оно позволяет понять? Почему данные иммуногистохимии, проведенной в разных лабораториях, порой сильно отличаются? На эти и другие вопросы отвечает руководитель Центра патоморфологической диагностики и молекулярной генетики Первой онкологической больницы города Москвы Анна Борисова Семенова.
Иммуногистохимические исследования вошли в нашу жизнь в конце прошлого века, и сегодня мы уже не представляем медицину без них. Можно долго говорить о том, насколько важны иммуногистохимические исследования для онкологии, но пациентов больше всего интересуют практические вопросы: в каких случаях их назначают, как проводят, для чего они нужны и можно ли доверять их результатам? Разберемся по порядку.
Зачем нужна такая диагностика?
Есть различные направления, при которых проводятся иммуногистохимические исследования. Но, прежде всего, они необходимы для определения биологических свойств опухоли и чувствительности опухолевых клеток к таргетным препаратам.
Сегодня каждого онкологического пациента лечат индивидуально. Понимание биологических свойств опухоли и того, насколько она будет чувствительна к тому или иному виду лечения позволяют клиницистам, лечащим врачам наиболее точно подобрать каждому пациенту тип терапии. Поэтому после биопсии и получения гистологического заключения иногда требуется провести углубленное иммуногистохимическое исследование.
Как его проводят?
В образце ткани опухоли происходит реакция связывания антигена и антитела. Затем образец подкрашивается специальным красителем, позволяющим увидеть биологические особенности в световом микроскопе. Это очень сложный и очень чувствительный процесс. Для проведения иммуногистохимических исследований требуется специализированное оборудование, чувствительное к различным факторам окружающей среды, например, температуре помещения, которую всегда нужно поддерживать на определенном уровне. За каждым стеклом стоит целая армия сотрудников (лаборантов, медицинских лабораторных техников, врачей), которые трудятся в ежедневном режиме с утра до ночи и семь дней в неделю.
Почему так долго?
Иммуногистохимическое исследование – сложный и длительный процесс, требующий усилия и внимания лабораторных специалистов. В среднем выполнение такого анализа занимает до 10 рабочих дней, а иногда даже дольше. Мы получаем окрашенные препараты, которые рассматриваем в световом микроскопе, но периодически возникает необходимость провести дополнительные исследования, поскольку не всегда биологические свойства опухоли можно определить сразу же. От того, насколько точно будет выполнено такое исследование, зависит, насколько точно затем можно подобрать эффективные лекарства. Этот анализ становится мечом в руках врача-химиотерапевта, который назначит персонализированное лечение. Медицина должна быть доказательной, поэтому специалисты выполняют свою работу добросовестно и добиваются максимально достоверных и точных результатов.
При каких онкологических заболеваниях требуется проведение иммуногистохимического исследования?
Иммуногистохимическое исследование проводится при различных опухолевых процессах, практически при всех видах злокачественных новообразований. Чаще всего такое исследование выполняют при такой распространенной патологии, как рак молочной железы, который стоит на первом месте в структуре женских онкозаболеваний. Кроме того, иммногистохимический анализ делают почти всем пациентам с лимфопролиферативными заболеваниями, с саркомами, раком легкого и тд. После иммуногистохимического исследования материал может направляться на молекулярно-генетическое исследование.
Иммуногистохимическое исследование во многих случаях является золотым стандартом в диагностике тех или иных опухолей и занесено практически во все клинические рекомендации, которые опубликованы на сайте Министерства здравоохранения РФ. Можно самостоятельно ознакомиться с информацией, какие виды иммуногистохимических исследований положены при тех или иных нозологических формах и какие требования предъявляются к такой диагностике.
Как мы обходились раньше?
Пациенты часто спрашивают: а как же мы жили раньше, ведь раньше не было подобных исследований? И не нужно было ждать, и все вроде бы было нормально. Но нужно учитывать, что раньше и таких методов лечения, какие есть в арсенале врачей сегодня, не было. Таргетная терапия появилась в мире лишь в конце прошлого века, а иммунотерапия и вовсе всего несколько лет назад. Раньше не было таких подходов, какие предполагает сегодня персонализированная медицина. Главный из них – пациенту должно быть назначено не просто подходящее именно ему лекарство, но и подходящая именно ему дозировка этого лекарства. И именно та схема, которая бы не осложнила течение заболевания, а позволила бы справиться с ним максимально быстро, максимально эффективно и с минимальным количеством побочных действий.
Почему в разных клиниках – разные результаты исследования?
Иногда пациенты не доверяют результатам полученного исследования, сомневаются в своем диагнозе и хотят перепроверить анализ в другом месте. В этом нет ничего плохого, но тут нужно учитывать очень важный момент. Сравнивать имуногистохимические заключения можно лишь в том случае, если исследования проводились с одного образца биологической ткани, взятого во время биопсии! То есть, взятого в одной конкретной точки в один момент времени.
Например, у пациента взято две биопсии с разницей в два месяца. И по каждому проведено иммуногистохимическое исследование. Нередки ситуации, когда пациенты частично отдают материал на пересмотр в разные лаборатории. Это в корне неправильно! В процессе лечения могут меняться биологические свойства опухоли. И если вы хотите корректно сравнить исследования, проведенные в разных клиниках для устранения спорных моментов, необходимо приносить полностью весь материал, который у вас забирали, все результаты биопсий, которые у вас брали все блоки и все стекла, которые у вас на руках. Сравнивать результаты можно лишь с одного фрагмента ткани и с одного биоптата. В одной биопсии может быть до нескольких биоптатов (например, при раке предстательной железы – до 12, а при раке молочной железы – до 6). И если в одной больнице провели исследования с одного биоптата, а в другой – с другого, сравнивать такие биоптаты некорректно: опухоли поликлональны и гетерогенны. Например, в одной опухоли рака молочной железы может встречаться более 60 клонов разных видов клеток, и в одну биопсию может попасть один клон, а в другую – совершенно другой клон клеток, который имеет совершенно другие биологические свойства. В результате вы получите разные результаты. Но это не значит, что кто-то ошибся и исследование проведено неправильно – причина лишь в биологических свойствах опухоли, которые нужно учитывать. И врач-химиотерапевт, и хирург обязательно должны знать обо всех результатах исследований, которые проводились.
Иммуногистохимические исследования – интересный и перспективный вид исследований, поэтому молодые доктора с удовольствием выбирают различные направления в этой области для углубленной специализации. Например, у нас есть молодые доктора, которые специализируются в области рака молочной железы или доктора, которые наиболее интенсивно и усиленно исследуют рак легкого.
Важно понимать, что над каждым анализом трудятся ни один день и иногда ни одну неделю. Но мы всегда стоим на страже ваших интересов и всегда работаем с вашим материалом до тех пор, пока не получим адекватный, достоверный и доказательный результат. И очень надеемся, что наши труды помогут вам в борьбе с онкологическим заболеванием!
