Инструкция по взятию крови у крс

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Условия взятия крови и ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят от техники взятия крови и используемых при этой инструментов.

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма животного, такие как: возраст; эмоциональное состояние и психический стресс; климатические и метеорологические условия и др.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

В целях отсутствия получения ложно-положительных результатов исследований рекомендуют брать кровь не позднее, чем за три недели до отела и не ранее чем через 3 недели после отела.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, шприцы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови животного на руки ветеринарного специалиста. В этом случае руки ветеринарного работника могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому животному путем контаминации кровью инъекционной ранки. Ветеринарный работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для ветеринарного персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветперсонала с кровью животного.

Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Вакуум-содержащая система представляет собой закрытую двухкомпонентную систему — вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

На основе возможностей вакуум-содержащихх систем был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота из хвостовой вены:

Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
Для взятия крови животное не фиксируют.
Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.
Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1. Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2. Отсутствие фиксации животного;

3. Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

4. Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)

5. Минимизация осложнений и стресса у животных;

6. Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7. Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

Иглы для взятия крови должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов. Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота.

При взятии крови из яремной вены иглу вкалывают на границе перехода верхней трети шеи в среднюю. Чтобы вызвать достаточное наполнение вены и уменьшать ее подвижность, вену сдавливает в середине шеи резиновым жгутом или пальцем. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом – в 20–30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь.

Кровь должна стекать по стенке пробирки по избежании разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место вкола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
Необходимость фиксации животного.
Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Цельную кровь, плазму и сыворотку для непродолжительного хранения помещают в холодильник (+2…+4°С), длительное хранение сыворотки требует температуры – 20°С.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Нарушение условий хранения проб может стать причиной погрешностей анализа. В результате длительного стояния сыворотки, над эритроцитами могут наступить сдвиги в концентрации ряда компонентов: повышается концентрация калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы, понижается содержание глюкозы вследствие гликолитических процессов.

При температуре около 20°С в цельной крови возрастает содержание аммиака, многие ферменты даже при температуре холодильника быстро теряют свою активность (креатинкиназа, кислая фосфатаза), в лактатдегидрогеназа, напротив, быстрее теряет активность при низких температурах.

Возникший при взятии или хранении гемолиз эритроцитов приводит к повышению концентрации калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы.

Неумелое встряхивание проб при перемешивании их содержимого или при транспортировке также может вызвать гемолиз эритроцитов.

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью (сывороткой).

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах

Взятие крови для гематологических исследований

Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-4⁰С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.

Источник

Лечебно-профилактические мероприятия в скотоводческой сфере требуют особого внимания и регулярности. Для этого выполняют периодический забор крови у КРС, чтобы проверить здоровье животного. От техники выполнения процедуры зависит качество исследования и будущая производительность племенного поголовья скота.

Как правильно подготовить животное

Кровь у коров берут на анализ для исследования ее биохимического состава. Это помогает исключить инфекционные болезни, подтвердить возможный диагноз ветеринара. Для этого нужна венозная кровь, которую проверяют на лейкоз, бруцеллез, туберкулез. Чтобы не травмировать сильно животное, важно правильно его подготовить к медицинской процедуре.

Обычно забор берут утром перед кормлением. После приема пищи нельзя брать анализ в течение 5 ч. Для серологического исследования берут по 7-10мл материала от КРС. Место для взятия пробы бреют электрической машинкой для стрижки коров для удаления волосяного покрова. Если нужно, то скотину предварительно фиксируют, а после участок нужно обработать антисептическим средством.

Иглы для забора материала должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не повредить противоположную стенку вены, не вызвать повреждения эритроцитов. Перед использованием иглы нужно прокипятить в дезинфекционном кипятильнике.

Методики, которые не требуют фиксации животного, легче переносятся коровами. Любой стресс скажется на количестве удоя, а это принесет финансовые потери. Нельзя брать кровь у самок за 3 недели до отела или в течение этого же времени после родов. Чтобы не было проблем в будущем, соблюдайте технику забора крови, выбирая менее травматичный вариант для животного и самый безопасный для ветеринара.

Все популярные техники забора крови у скота

Взять кровь на анализ у животного можно из хвостовой, яремной и молочной вен. Процедура имеет свои особенности для каждой из зон, но все зависит от скорости и местоположения кровотока.

Из молочной вены

Она находится на животе коровы с 2-х сторон, сбоку от вымени. Лучше всего ее видно у взрослых особей. Этот вариант менее предпочтителен, так как у животного эта зона считается очень чувствительной. Плюс ко всему эта вена залегает более глубоко, чем это кажется на первый взгляд. Корову придется фиксировать, удерживать с разных сторон. А если нет специального оборудования, то для забора крови придется привлекать несколько человек.

Процесс проходит таким образом после удаления волос и обработки антисептиком:

Прощупывают пальцами венозный бугорок.
Вводят плавно иглу шприца параллельно поверхности кожи.
Берут биологический материал.

Такая методика может быть травматичной для крупного рогатого скота, что скажется на удоях. Обычно фермеры стараются использовать другие методики.

Из яремной вены

Для этого используют кровопускательную иглу и стерильную пробирку, куда набирают биоматериал по стенке. Сосуд следует расположить к нижней трети шеи животного. Голову придется зафиксировать, что тоже является стрессом для коровы. Чтобы вызвать быстрое наполнение вены, уменьшить ее подвижность, кровеносный сосуд можно сдавить резиновым жгутом в середине шеи.

Техника следующая:

Зажимают большим пальцем сосуд на яремной вене.
Вводят иглу под острым углом в направлении 20–30° к поверхности кожи в направлении к голове. При этом глубина введения – 1 см.
Собирают нужное количество крови. Она должна стекать по стенке пробирки во избежание разрушения эритроцитов. При необходимости можно сразу смешивать жидкость с нужным количеством антикоагулянта.
Перед извлечением иглы из яремной вены снимают жгут, а вену пережимают пальцем выше места прокола.
После извлечения иглы место укола некоторое время сдавливают тампоном, чтобы не было гематомы.
После снова используем в обрабатываемой зоне дезинфицирующий раствор.

Материал в таких условиях считается нестерильным, а жидкость во время забора может разбрызгиваться.

К минусам этой методики можно отнести:

Большой риск распространения инфекции на ферме. Пострадают не только животные, но и люди. Это такие болезни как туберкулез, бруцеллез, лейкоз крупного рогатого скота.
Нужно фиксировать животное.
Будут осложнения после процедуры – гематома, абсцесс.
Стресс у скота, снижение удоев минимум на 5%.
Разбрызгивание крови, которая обязательно попадет на руки ветеринара, кормушку или др. объекты в хозяйстве.

В конце нужно добавить, что полученные пробы – нестерильные.

Из хвостовой вены

Такой метод отличается высокой скоростью забора биологического материала. Животное в этом случае фиксировать не нужно, а сама процедура легко переносится КРС. Последние методики в заборе крови как раз нацелены на взятие материала из хвостовой вены у коров.

Как проходит процедура:

Берем хвост коровы на середине длины, а после – поднимает его вверх.
Дезинфицируем спиртом область между 2 и 5 позвонком, а также прилегающую к ним зону.
Берем стерильную иглу или систему для забора крови в 1 руку, а в другой держим хвост.
Иглу нужно вводить перпендикулярно к поверхности хвоста, а глубина введения должна быть от 0,5 до 1 см.
Делаем забор биоматериала.

Методика исключает контакт ветеринара с биоматериалом животного, а это является самым большим преимуществом. Трудности в заборе крови в сосуде создает слабый кровоток в этой части тела скота, но вакуумные системы помогают решить эту проблему. В результате процедура выходит эффективной и максимально безопасной.

В чем плюсы вакуумных систем

Применение вакуумных технологий для получения анализа помогает выполнить процедуру КРС максимально быстро и безопасно. Эта методика отлично работает на хвостовой вене. Процесс никак не травмирует скот, убирает прямой контакт ветеринара и животного с биологическим материалом.

Оборудование состоит из иглы и шприца с контейнером. Диаметр иглы обычно составляет 0,9 мм, она снабжается клапаном, который блокирует вытекание крови, а это снижает вероятность появления осложнений. Корпус шприца сделан из прочного пластика, само приспособление играет роль транспортного контейнера. В этой же емкости легко выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.

Плюсы вакуумной системы:

Не нужно фиксировать скот.
Снижение стресса у животного.
Можно взять стерильную пробу.
Удобство использования, так как не нужно позже материал переливать в другую тару.
Нет прямого контакта ветеринара с биоматериалом.
Исключается риск разнесения инфекции среди поголовья скота.

Маркировка на таком изделии разрешает использование цветового кодирования, а это позволит сортировать полученные пробирки.

Какие могут быть ошибки

При выполнении обычной методики получения крови на анализ, например, из яремной вены скота, есть вероятность попадания материала на людей и окружающие вещи. Если скот заражен, то появляется риск расползания инфекции по ферме. При этом открытый способ отнимает много времени, требует определенной подготовки (минимум – фиксации животного), сноровки и предельной аккуратности.

Если нарушить нормы асептики и техники получения анализа у КРС, то готовый образец может не отвечать нужным требованиям. У коровы же могут появиться гематомы и абсцессы. Не нужно форсировать забор, так как произойдет частичный гемолиз кровяных клеток.

Как хранить пробу и сыворотку крови

Материал нужно поместить в холодильник при температуре +2…+4°С. Если придется длительное время хранить сыворотку, то нужна температура +20°С. Любое нарушение этих условий привлечет за собой погрешности в анализе. Неумелое встряхивание пробирок во время перемешивания их содержимого или в процессе транспортировки тоже вызывает гемолиз эритроцитов.

Сыворотку крови нужно направить на исследование в течение первых суток после взятия пробы, но не позже 3-го дня (в исключительных случаях). На каждой пробирке указывают номер, кличку животного, ФИО владельца коровы. Все пробы закрывают плотно стерильными пробками, ставят в вертикальное положение для пересылки. Зимой анализы нужно тщательно упаковать, чтобы при перевозке они не замерзли. Обязательно ветеринар, приглашенный на ферму для забора крови, готовит вместе с пробами сопроводительный документ в двух экземплярах.

Источник

Download Article

Blood samples obtained from cattle are very useful for a variety of means, from testing for disease to checking pregnancy status. The quick and relatively simple means of taking blood is low stress and almost painless for the animal. However, knowing where and how to place the needle to quickly get a sample is important. Your veterinarian can show you where and how to take a blood sample, though this article will also guide you in following the proper procedures for two locations with two different types of blood sampling.

Two key locations are used for taking blood samples: From the coccygeal vein of the tail-head, and the jugular vein of the neck. There are also two methods of blood sampling: With the classic needle and syringe, and exiting the contents of the syringe into a vaccutainer tube, and with a double-pointed needle that draws blood into a vaccutainer tube, no syringe required.

To make things simpler, the classic needle and syringe is coupled with obtaining a blood sample from the tail-head, and the double-pointed needle holder is coupled with taking blood from the jugular vein. You can use either blood-drawing method from either the tail-head or the neck.

1

Order your blood test kit and have it shipped to you. The number of samples that need to be taken should be one per bovine. Thus, the number of tubes needed will depend on how many animals you need to draw blood from.
2

Confine and restrain the animal. It makes taking blood much easier and safer for both you and the animal if the animal is confined to a head-gate or squeeze chute. For this method, a head-gate with a neck extender isn’t really necessary.

Advertisement
3
Raise the tail and locate the coccygeal blood vessels underneath the tail. The tail needs to be raised right up in the air so that its perpendicular to the ground. The blood vessel of choice is located under the tail, which is where you will be taking blood from.
- Note though that the vessels actually form an upside-down V from either side of the anus up a couple inches the tail. Where the V ends and the vessels continue parallel to the length of the tail is where you should take your blood sample from.
4

Clean the area to be sampled. Because the sample is being taken from under the tail, close vicinity to the anus, bacteria from feces could potentially contaminate the sample if the area is not swabbed with alcohol first. A cotton ball dipped in 70% rubbing alcohol will work, just by holding the cotton ball to the opening of the bottle and tipping the bottle nearly upside down to wet the ball. (You can also use a 4×4 gauze.) Rub, in an upward motion only away from the anal region, the area you will be inserting the needle into.
5
Insert the needle directly into the vein. The needle needs to be carefully inserted perpendicular to the angle of the tail; but not all the way in.
- It is easier to put the needle in perpendicular to the tail rather than try to put it in parallel because it may be more difficult to puncture the vein when the needle is at more of an angle to the vein than when it’s 90-degrees to that vein.
- Use a short needle: an 1-inch, 18-gauge needle is good enough for this job. And as mentioned, only insert the needle slightly over half-way in, never all the way.
  - The syringe accompanying the needle should not be more than 5 cc; but, there’s nothing wrong with having a 10 cc syringe, just note that you don’t need to fill it up completely with blood.
6

Draw slowly back on the plunger of the syringe. Allow 3 to 5 mL (or 3 to 5 cc) of blood to enter the syringe. Most labs only need a small amount of blood to do the test and to have some left over in case the lab technicians make a mistake.
7

Remove the needle the same way you inserted it. Apply pressure to the area to stem excess bleeding with a gauze or cotton swab. Then lower the tail when bleeding appears to have stopped.
8

Take a rubber-capped test tube (called a «vacutainer tube») and insert the needle into the top of the cap. The vacuum-sealed tube will vacate the contents of the syringe without you needing to apply pressure to the plunger. Remove the needle when all contents have been vacated.
9

Label the tube. The vacutainer tube must be labelled with the identifying number and/or name of the animal, sample number (Sample #1, 2, 3, etc., or Sample A, B, C, etc.), and name of your farm.
10

Put the tube back in its place. Usually the box that contained the kit has a built-in tray to place the vacutainer tubes in. Place the tubes in that box with the bubble wrap surrounding each tube to protect them.

1
Assemble the needles with the needle holder (optional). You must use a fresh blood-letting needle for every cow, for reasons that include you make sure each needle is sharp for a clean puncture into the vein, and so that you don’t risk contaminating the samples between animals. Assembling the needles just makes it easy for you to grab the next needle after disposing the last one just used.
- The double-pointed needle holder is designed so that one needle is on the outside, as the «blood-letting» needle, and the other needle, pointing the opposite way, is housed inside a short open-ended tube that is wide enough to insert a vacutainer test tube while keeping your fingers safe.
2

Ready the double-pointed needle with a clean needle for blood-drawing. Make sure you also have a needle inside the holder ready for the tube. Make sure you have the cap on the outside needle you will use to puncture the jugular vein.
3
Restrain the animal. Just as in the method above, the animal must be restrained in a head-catch or squeeze chute for the safety of both the handler and the animal.
- While the animal’s head is caught, use a rope halter to tie the animal’s head off to one side, exposing the side of the neck.
4
Find the jugular furrow and «tap» the jugular vein. The groove beneath the muscle of the neck (which is the top half to two-thirds of a cow’s neck) is where the jugular vein can be felt. With the fingers pf one hand apply pressure to the jugular vein lower down on the neck, right below the biggest bulge of the neck muscle; with the other stroke the grove by starting from the start of the groove at the head and moving your hand downwards to almost your other hand. This will encourage the vein to pop out more, and make it easier for you to do the next step.
- The jugular vein is actually quite large and especially noticeable when animals have their summer coat. You may even be able to see it pulsating if you look carefully.
5
Put the blood-letting needle into the vein. Keeping the fingers of one of your hands on the lower part of the neck (where the deepest jugular groove is and ends, as indicated in the step above), insert the outside needle into the vein at an angle that is perpendicular to the slope of the neck, and only at half of the needle’s length.
- Use a 1-inch 18-gauge needle for going into the vein.
- Feel free to use your forefinger on the needle as a guide, though this is completely optional.
- As in the method above, the reason to go perpendicular into the vein is so that it reduces the needle slipping and missing the vein completely. All needles are tapered at the end, not pointed like a spear. The greater the angle the needle was inserted (i.e., more parallel to the neck), the chance of the needle slipping and missing the vein completely increases.
- You may put in the needle alone in first before attaching the needle holder, or puncture the vein while the blood-letting needle is already attached to the double-needle holder. Whatever you chose to do is optional, and your veterinarian may encourage the same.
6
While the blood-letting needle remains in the vein, attach a vaccutainer tube to the needle on the inside of the double-needle holder (see step 1). Allow blood to drain into the tube until you have around 3 to 5 mL of blood.
- Once the vaccutainer tube is attached to the needle unit it takes only a few seconds for the tube to get full. You must pay attention to the tube to make sure you remove it before it gets too full.
7

Once you have obtained your sample, remove the vaccutainer tube from the needle-holder unit. Then remove the double-needle holder unit from the animal, pulling it out in the same direction you put it in.
8

Apply pressure to stop the bleeding. Use gauze or a cotton swab to do so. Check about every 5 seconds to see if bleeding has stopped. It should only take 30 seconds or less for the area to stop bleeding.
9

Cap the outside needle, and remove it into a biohazard disposal box. Obtain a fresh needle for the next animal, and keep it capped for now.
10

Label the tube. Tube must be labelled with the identifying number and/or name of the animal, sample number (Sample #1, 2, 3, etc., or Sample A, B, C, etc.), and name of your farm.
11

Place tube back in the box. The box that contained the blood-sampling kit has a built-in tray to place the vacutainer tubes in. Place the tubes in that box with the bubble wrap surrounding each tube to protect them.
12

Repeat for other cattle. Release the animal and move on to the next animal that needs to have its blood collected.

Ask a Question

200 characters left

Include your email address to get a message when this question is answered.

Submit

Video

Always label each and every tube after you do every animal. This way you keep track of which animals you got a sample from, and eliminates the risk of forgetting which cow, bull or heifer a mystery sample came from.
Use a fresh needle for each animal. This will eliminate risk of disease transfer if the same needle is used on multiple animals.
There is no need to be in a hurry to get blood samples. The animal may struggle a bit, so if you have to wait until they settle down, then do so.
- The needle poking into the vein will cause the animal to startle a little. In some cases, some may over-react especially if they’re not used to being handled. Let them fight; they’ll calm down soon enough for you to get your sample.
- The rope-halter will help keep the animal’s head restrained for getting blood from the neck. Tie their heads up far enough that they’re not going to struggle, but it’s also not going to put too much strain on their neck. The animal will tell you if you need to tighten up the slack or let a little slack off.

Show More Tips

Handle needles with care. You are not taking blood samples from yourself, but from your cattle, so avoid any means, accidental or otherwise, of poking yourself or even others who are working with you!
Do not drop the test tubes! Handle the tubes carefully to avoid damaging them. Once they are damaged they may leak or loose their efficacy and potentially be contaminated.
Animals not used to being handled can make it dangerous to take blood samples from, especially from the neck region. You may be better off taking samples from the tail-head instead, because lifting the tail up vertically will stretch the hamstrings preventing the animal from kicking out at you. The risk though is when you grab the tail to lift it and lower it after you’ve gotten your sample.

Things You’ll Need

One 1-inch 18-gauge needle per animal
One 5 or 10 mL syringe per animal
One vacutainer tube per animal
Head-gate or squeeze chute with head-gate
Double-pointed needle holder with a needle on outside and needle inside.
Biohazard box for needle disposal
A cow, bull, or heifer to take sample from
Wrappings to cushion tubes (absorbent newspaper, bubble-wrap, plastic foam-wrap, etc.)

References

About This Article

Thanks to all authors for creating a page that has been read 36,004 times.

Reader Success Stories

«I am applying for a job as a blood sampler and this explained the process very well. Thanks.»

Did this article help you?

Источник

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
Для взятия крови животное не фиксируют.
Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.
Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1. Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2. Отсутствие фиксации животного;

3. Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

5. Минимизация осложнений и стресса у животных;

6. Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7. Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
Необходимость фиксации животного.
Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах

Взятие крови для гематологических исследований

Источник

Лечебно-профилактические мероприятия, как неотъемлемая часть ветеринарного надзора в скотоводческой отрасли, требуют пристального внимания и регулярности. Взятие крови на анализ у КРС является важной профилактической процедурой, от техники выполнения которой зависит достоверность исследования, безопасность окружающих и дальнейшая производительность коров.

Содержание

1 Подготовка животного
2 Техника взятия крови у КРС
- 2.1 Из яремной вены
- 2.2 Из молочной вены
- 2.3 Из хвостовой вены
3 Особенности вакуумного забора крови
4 Возможные ошибки

Подготовка животного

Забор крови у коров проводят для исследования ее биохимического состава, исключения инфекционных заболеваний или подтверждения предполагаемого диагноза. Венозная кровь необходима для проведения анализа на лейкоз, бруцеллез, туберкулез. Чтобы взять материал у коровы, не причинив вреда здоровью животного, необходимо правильно подготовиться к процедуре. Оптимальное время для забора – утренние часы перед первым кормлением. После приема пищи не рекомендуется брать кровь на анализ в течение 5 часов.

Место для взятия пробы освобождают от волосяного покрова и, при необходимости, фиксируют скотину, после чего участок обрабатывают антисептиком. Для дезинфекции подходит 70 % раствор этилового спирта, 1 % спиртовой раствор салициловой кислоты, 5 % спиртовой раствор йода.

Методики, не требующие принудительной фиксации положения тела, легче переносятся животными. Стресс от проведенной процедуры может привести к снижению удоя. Не рекомендуется брать кровь у самок за 3 недели до отела и в течение 3 недель после родов.

Мнение эксперта

Заречный Максим Валерьевич

Агроном с 12-ти летним стажем. Наш лучший дачный эксперт.

Задать вопрос

Чтобы не возникало осложнений, необходимо соблюдать технику взятия крови, выбирая менее травматичный для коровы и безопасный для человека вариант.

Техника взятия крови у КРС

Забор крови у коров проводят из яремной, хвостовой или молочной вен. Работа в каждой зоне имеет свои особенности, обусловленные различным местоположением и скоростью кровотока.

Из яремной вены

В соответствии с распространенной и устоявшейся методикой взятия крови у коров из яремной вены, используют кровопускательную иглу и стерильную пробирку, в которую набирают жидкость по стенке. Сосуд располагается в нижней трети шеи животного. Голову необходимо зафиксировать, что становится для коровы стрессовым фактором.

Техника забора крови из яремной вены:

Фиксируют голову животного в неподвижном положении.
Подготавливают нижнюю треть шейной зоны, удаляя излишки волос, дезинфицируют поверхность кожи спиртовым раствором.
Зажимают большим пальцем руки сосуд.
Вводят иглу в вену под острым углом к поверхности в направлении к голове. Глубина введения составляет 1 сантиметр.
Собирают кровь в пробирку.

Материал, собранный таким способом, не стерилен, жидкость может разбрызгиваться.

Из молочной вены

Молочная вена располагается на животе коровы с двух сторон, сбоку от вымени. Она хорошо заметна у взрослых самок, но процесс забора осложняет высокая чувствительность данного участка тела и более глубокое залегание вены, чем кажется визуально.

Корову необходимо надежно зафиксировать и удерживать, для чего часто требуется не один человек.

Техника забора крови из молочной вены:

Фиксируют и удерживают животное.
Удаляют волосяной покров с прилегающей к вене области.
Обрабатывают участок спиртовым раствором.
Прощупывают пальцами руки венозный бугорок.
Вводят иглу внутрь сосуда параллельно поверхности кожи.
Набирают биоматериал.

Процедура для коровы неприятна и может стать причиной снижения удоев в результате полученного стресса. Сложный и травматичный для животного метод в современных условиях применяется редко.

Из хвостовой вены

Взятие крови из хвостовой вены проходит быстро, не требует принудительной фиксации животного и обычно легко им переносится. Современные методики нацелены на разработку приспособлений для забора материала именно с данного участка тела коровы.

Правила взятия крови из хвостовой вены:

Берут рукой хвост коровы на середине длины и поднимают его вверх.
Дезинфицируют спиртовым раствором область 2-5 позвонка и прилегающие участки.
Берут стерильную иглу или готовую специальную систему в одну руку, другой – держат хвост.
Вводят иглу перпендикулярно по центру ширины хвоста на расстоянии около 10 сантиметров от его основания. Глубина введения составляет 0,5-1 сантиметр.
Набирают материал.

Процедура исключает контакт человека с биологическими жидкостями скота, что считают одним из главных достоинств. Трудности при заборе создает медленный кровоток в сосуде, но современные вакуумные системы решают эту проблему, делая процедуру безопасной и эффективной.

Особенности вакуумного забора крови

Использование современных вакуумных систем для забора крови позволяет проводить процедуру КРС быстро и безопасно. Вакуумный способ хорошо работает на хвостовой вене. Процесс не травмирует корову, исключает прямой контакт человека и других животных с биоматериалом.

Система состоит из иглы и шприца-контейнера. Игла, имеющая оптимальный диаметр (обычно 0,9 миллиметра), снабжена клапаном, который исключает вытекание жидкости, что уменьшает вероятность возможных осложнений. Шприц, одновременно выполняющий функцию транспортного контейнера, сделан из прочного пластика. В нем же можно выделить сыворотку или добавить антикоагулянт.

Достоинства вакуумного метода:

отсутствие необходимости фиксации животного;
минимизация стрессового фактора для коровы;
исключение прямого контакта человека с материалом;
получение стерильной пробы;
исключение непредвиденного риска распространения инфекции;
удобство в использовании без переливаний образца в транспортную тару.

Маркировка вакуум-систем включает удобное на практике цветовое кодирование, что позволяет сортировать взятые пробы.

Возможные ошибки

При выполнении стандартной методики взятия крови из яремной вены велика вероятность попадания материала на человека и окружающие предметы. Если животное заражено, возникает риск распространения инфекции. Открытый способ занимает много времени, требует подготовки и предельной аккуратности.

При нарушении правил асептики и техники забора крови полученный образец может не соответствовать требованиям, у коровы могут возникать осложнения в виде абсцессов, гематом. Не рекомендуется форсировать забор во избежание частичного гемолиза кровяных клеток.

Источник

Массовое взятие крови у поголовья крупного рогатого скота (КРС) – это трудоёмкая и травмирующая животное процедура. Проблемное состояние поголовья КРС в России, по основным видам заболеваемости, делает эту работу частой и неизбежной процедурой, направленной на оздоровление животных.
В связи с этим разработка новых, надёжных, нетравмирующих животных и наименее трудоёмких методов взятия крови у крупного рогатого скота, является актуальной задачей. Использование вакуумных шприцев — контейнеров, как показала практика применения в нескольких областях РФ, может коренным образом изменить технологию взятия крови у поголовья КРС.
Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Устоявшаяся методика взятия крови у КРС

Кровь берут из v.jugularis (яремная вена);
Место, где предполагается произвести прокол, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода;
Для взятия крови животное фиксируют – привязывают голову животного;
Большим пальцем нажимают на вену в нижней трети шеи. Задержка оттока крови вызывает набухание вены в виде толстого шнура;
Кровопускательную иглу вводят под острым углом по направлению к голове, продвигая в полость сосуда приблизительно на 1 см.;
Кровь в пробирку набирают по стенке.

Кроме того, необходимо готовить посуду, добавлять антикоагулянт для анализов на общую гематологию, выделять сыворотку и удалять сгусток для анализов , требующих получения сыворотки.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
Необходимость фиксации животного.
Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Однако теперь разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота

Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
Для взятия крови животное не фиксируют.
Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.
Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.

Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)
Отсутствие фиксации животного;
Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;
Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)
Минимизация осложнений и стресса у животных;
Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений
Возможность получения стерильной крови.

Эти преимущества делают применение в ветеринарии перспективной технологией, позволяющей быстро, качественно и безопасно решать проблему массового взятия крови у поголовья. Сохранение надоев и отсутствие осложнений – являются показательным экономическим аргументом необходимости повсеместного внедрения современной методики.
Предлагаем Вам ссылки , где вы можете найти ролики о заборе крови из хвостовой вены: http://www.youtube.com/watch?v=ZEsHMwKFbKg
https://www.youtube.com/watch?v=sDlNqOnHvao
https://www.youtube.com/watch?v=oSQb7BIiHIM

Источник

В ветеринарных лабораториях уточняется диагноз, определяется эффективность обработок, выявляются скрытые патологические процессы… Первым делом отбирается образец (биопроба). Речь идет о крови, продуктах жизнедеятельности (моче и кале), секрете молочной железы, поте, содержимом желудка, рубца и кишечника, тканях, кусочках органов. Чаще исследуется кровь. Именно о ней мы сегодня и поговорим. Вы узнаете, как получают такой материал у разных видов животных, доставляют его в лабораторию.

В силу нестабильности химического состава крови для получения достоверных результатов нужно соблюдать правила отбора и хранения биологического материала.

Нюансы отбора материала

При отборе крови учитывается суточная динамика и соблюдаются правила антисептики. Кровь следует отбирать перед кормлением. Если же животное получило корм, то надо выждать не менее пяти часов. В крови, отобранной раньше, концентрация белка, глюкозы, липидов, лейкоцитов и др. выше физиологической нормы. Пример: норматив по глюкозе в сыворотке крови у КРС – от 2,2 до 3,5 ммоль/л, но если отобрать кровь через час после кормления, значение показателя увеличивается как минимум в два раза.

Один из факторов, определяющих концентрацию минералов, эритроцитов, – время суток. По этой причине материал повторно отбирается в одни и те же часы.

В некоторых случаях взятие пробы невозможно без нарушения целостности тканей. В подобных ситуациях обязательна асептика-антисептика. Лучший антисептик – 70-градусный этиловый спирт. Правда, ветеринары пользуются им, когда есть необходимость во введении туберкулина. Также эффективен спирт-эфир. В крайнем случае пользуются 3-процентной карболовой кислотой.

В стране имеется широкий ассортимент антисептических средств для обработки места прокола (для взятия крови или инъекции). Основа львиной части антисептиков представлена этиловым спиртом, используемым вкупе со вспомогательными бактерицидными компонентами, усиливающими действие.

При выборе препарата нужно руководствоваться составом, ценой и удобством применения. Себя зарекомендовали антисептические спиртовые средства, используемые в виде аэрозолей.

Большое значение имеет анализ крови и лекарства. Материал для анализа отбирается до лечебных мероприятий. Но в любом случае берутся в учет лекарства, которые получало животное. Так, по причине внутривенного введения средства иногда уменьшается количество эритроцитов, гемоглобина… Использование вакцины вызывает лейкоцитоз.

Чем быстрее кровь окажется в пробирке, тем меньше вероятность получения искаженных результатов. На билирубине, витамине В2 отрицательно сказывается свет. Поэтому пользуются светонепроницаемыми пакетами. Допускается временное хранение материала в ящике. При риске разрушения вещества под влиянием кислорода кровь отбирают в пробирку с вазелиновым маслом: так получаемая сыворотка находится под слоем масла и недоступна для воздуха.

Моменты, учитываемые при выборе места отбора крови:

видовая принадлежность животного;
размер животного;
анатомия сосудов (кровь берется из самых доступных вен);
опыт, личные предпочтения специалиста.

Взятие крови у коровы

У КРС кровь берется из яремной, хвостовой и молочной вен.

Отбор пробы из яремной вены – наиболее популярная процедура, но требует определенной сноровки при нахождении места прокола и при фиксации животного. Корове необходимо тщательно фиксировать голову и шею, что сказывается на доступе к яремной вене.

В плане безопасности кровь лучше брать из хвостовой вены. Правда, в этом случае приходится иметь дело с медленным кровотоком. Такая проблема решается посредством так называемых «пробирок с вакуумом», более тщательной очистки места прокола и опыта. Допустимо использовать «вакуум» шприца: после прокола кожи и сосуда к игле присоединяем шприц (со стабилизатором или без) и набираем кровь. Стоит помнить, что форсированное насасывание крови в шприц может привести к частичному разрушению (гемолизу) клеток крови, что отразится на корректности результатов. И все же мы рекомендуем практиковать именно этот способ отбора крови.

Техника отбора крови из хвостовой вены:

Животное фиксируют в станке.
Очищают область у корня хвоста.
Иглу берут в одну руку, второй рукой удерживают хвост и поднимают его так, чтобы визуально можно было контролировать место введения иглы.
Игла вводится на глубину примерно 1 см перпендикулярно нижней поверхности хвоста, по центру. Лучше прокол делать на расстоянии 8-12 см от основания хвоста. Можно использовать ориентир «ширина кисти»: от основания хвоста отступить 1,0-1,5 ширины кисти. В этой области хвостовая вена имеет наибольший диаметр (около 0,5-0,8 см) и вероятность попасть в нее максимальна.

Молочные вены определяются как тяжи на нижнебоковой поверхности живота с двух сторон, идущие от вымени вперед. Они очень хорошо видны и доступны, что создает псевдо-эффект банальности процедуры. На самом деле при проколе молочных вен самая главная проблема – безопасность! Во-первых, действия происходят вблизи тазовых конечностей. Во-вторых, кожа, покрывающая сосуд, достаточно толстая, поэтому необходимо точно рассчитать силу удара при проколе. Автор получал травмы рук при таком взятии крови у коровы.

Взятие крови у свиней

Лучшее место для процедуры – сосуды ушных раковин, кончик хвоста, глазной синус, передняя полая вена.

Многие специалисты отсекают кончик хвоста, что ведет к гемолизу. При этом стерильность пробы оставляет желать лучшего. Картина ухудшается кровотечением и возникающим каннибализмом.

Эффективнее брать материал из передней полой вены, но для этого нужен определенный опыт. К тому же, такой способ является трудоемким.

Удобнее материал брать из глазного синуса. Стратегия взятия биопробы:

Фиксируют свинью за верхнюю челюсть с помощью петли. Поросят допускается фиксировать в спинном положении, дополнительно ограничить подвижность головы рукой.
Кровь берется при помощи вакуумного шприца. Допускается использовать обыкновенную иглу и пробирку.
Иглу вводится во внутренний угол глаза под третье веко, скосом к кости (не к глазному яблоку!). При этом манипулируют канюлей так, чтобы оттеснить глазное яблоко иглой (условно ориентируясь острием на противоположный локтевой бугор).

С опытом легко определяется необходимая глубина введения иглы: 2-3 см – у взрослых свиней, 0,5-1,0 см – у поросят. Начинающим ветврачам можно иглу вводить до ощущения упора в кость.

Если все сделано правильно, то при отводе иглы от кости кровь должна начать течь сама. Как правило, на пробирка объемом 20 мл наполняется за полторы минуты (быстрее при визге животного).
Капающая кровь из места прокола убираются тампоном.

Тип крови

Перед процедурой надо знать, какая кровь нужна для исследования: стабилизированная («несвернутая») или нестабилизированная (свернутая).

Стабилизированную кровь предохраняют от свертывания, добавляя в нее антикоагулянт. Такая кровь, как правило, используется для общего клинического анализа (определения количества эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов, гемоглобина, гематокрита, СОЭ, цветового показателя).

Применяемые на практике антикоагулянты представлены различными солями и биологическими веществами:

калия или натрия оксалаты;
натрий лимоннокислый;
трилон Б;
гепарин. Запрещен при ПЦР-диагностике.

Чтобы стабилизировать кровь у пернатого, удваивается доза антикоагулянта.

Источник

Рекомендации

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Как правильно подготовить животное

Все популярные техники забора крови у скота

Из молочной вены

Из яремной вены

Из хвостовой вены

В чем плюсы вакуумных систем

Какие могут быть ошибки

Как хранить пробу и сыворотку крови

Video

Things You’ll Need

References

About This Article

Reader Success Stories

Did this article help you?

Рекомендации

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Подготовка животного

Техника взятия крови у КРС

Из яремной вены

Из молочной вены

Из хвостовой вены

Особенности вакуумного забора крови

Возможные ошибки

Нюансы отбора материала

Моменты, учитываемые при выборе места отбора крови:

Взятие крови у коровы

Техника отбора крови из хвостовой вены:

Взятие крови у свиней

Тип крови